HYDROBIOCLIMAT DU FLEUVE SENEGAL D, DANS LA ZONE...
HYDROBIOCLIMAT DU FLEUVE SENEGAL
D,
DANS LA ZONE D'INFLUENCE DU
CORBIN
BARRAGE DE DIAMA : COMPILATION
P, CECCHI
DES DONNEES RECUEILLIES D'AVRIL
1988 A JUIN 1990
- .--l.l-
A R C H I V E
CENTRE IIE RECHERCHES OCÉANOGRAPHIQUES DE DAKAR - TIAROYE
No 185
* I N S T I T U T S É N É G A L A I S D E R E C H E R C H E S A G R I C O L E S *
M A R S 1 9 9 1
H~DROBIOCLIMAT DU FLEUVE SENEGAL DANS LA ZONE D’INFLUENCE
DU BARRAGE DE DIAMA : COMPILATION DES DONNEES
RECUEILLIES D’AVRIL 1988 A JUIN 1990,
D. CORBIN et P. CECCHI
i.-es d o n n é e s p r é s e n t é e s f u r e n t r e c u e i l l i e s d a n s l e c a d r e
d e l ’ é t u d e d e l a v a r i a b i l i t é d e l ’ h y d r o b i o c l i m a t d a n s ‘ l a B a s s e
V a l l&e d u
Fleuve
S é n é g a l e n
r e l a t i o n
avec
1 ‘ é d i f i c a t i o n
récente d u b a r r a g e a n t i - s e l d e Diama.
L e s m é t h o d e s employdes
sont
b r i è v e m e n t r a p p e l é e s e t
l e s r é s u l t a t s d e 4 8 c a m p a g n e s
ci’ échant? 1 lonnage
sont
compi lés
pour
q u e l q u e s desc;ripteurs
p r i n c i p a u x : s a l i n i t é , c o n d u c t i v i t é , t e m p é r a t u r e , t r a n s p a r e n c e ,
m a t i é r e s e n s u s p e n s i o n ,
s e l s n u t r i t i f s ( n i t r i t e s ,
n i t r a t e s ,
phosphates
r é a c t i f s d i s s o u s ,
s i l i c a t e s ) ,
c h l o r o p h y l l e t o t a l e
e t m a t i è r e o r g a n i q u e d i s s o u t e (A254).
N O U S
exprimons
notre
r e c o n n a i s s a n c e à
M o n s i e u r J . L .
DUPRE\\‘,
r e s p o n s a b l e d u l a b o r a t o i r e d e c h i m i e O R S T O M d e D a k a r ,
p o u r i’a,rde t e c h n i q u e q u ’ i l a apportbe à l a réalisation d e c e
t r a v a i 1 .
TABLE DES MATIERES
1. METHO#ES........,..........,.............,,.........,3
1 . 1 . B r g a r i s a t i o n e t c h r o n o l o g i e d e s t r a v a u x . . . . . . . . . 3
1 .2. C h o i x d e s s t a t i o n s . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
. . . 4
1 . 3 . Prélèvements..................................~ .6
X . 4 . Conductivite e t s a l i n i t é . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
. . . 6
1 . 5 . Température.................................~.~ .6
1.5, Transparençe...............................~
. ...8
1.7. Matières en suspension . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
. . . 8
1 . 8 . S e l s n u t r i t i f s . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
..~.8
X . 8 . 1 ,
Conservation . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
. . . 8
1.8.2, Dosages . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
..~..8
1.9. Chlorophylle totale . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
. . . 8
I.lO.Matière organique dissoute ......................9
I I , RESULTATS.........................................~..9
S E R I E : 1 : D o n n é e s r e c u e i l l i e s d ’ a v r i l 1 9 8 8 a
j u i l l e t 1 9 8 9
l o r s d e l’etude d e
l ’ e n s e m b l e d e l a z o n e d’influente
du barrage de Diama...................,...lO
SERIE: 2: Données
r e c u e i l l i e s d e n o v e m b r e
1 8 8 9 à j u i n 1 9 9 0
l o r s d u s u i v i
h e b d o r n a d a i r e d e 1 ‘ e s t u a i r e d u
f l e u v e S é n é g a l . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 2 0
ANNEXES: Protocoles des
a n a l y s e s d e s s e l s
n u t r i t i f s e f f e c t u é e s a u l a b o r a t o i r e
de chimie du CRODT............................37
- Dosage des nitrites.........................3 8
-. Dosage des nitrates et des nitrites.........4 0
-’ D o s a g e d e s s i l i c a t e s . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 4 4
- D o s a g e d e s p h o s p h a t e s reactifs d i s s o u s . . . . . . 4 7
INTRODUCTION
Dans l e c a d r e d e l a m i s e e n v a l e u r d u f l e u v e S é n é g a l ,
d e u x b a r r a g e s o n t é t é é d i f i e s s u r l e f l e u v e p a r l e s é t a t s
r i v e r a i n s ,
s o u s 1 ‘ é g i d e d e I’OMVS(I ) . L e b a r r a g e a n t i - s e l d e
Diama r é p o n d a u x b e s o i n s d e s a m e n a g e u r s d e l i m i t e r l’-intrusion
s a l i n e d a n s l a B a s s e V a l l é e l o r s d e s é p i s o d e s a n n u e l s d e
t a r i s s e m e n t d e s é c o u l e m e n t s d u c o u r s d ’ e a u e n s a i s o n s è c h e .
Les
p r i n c i p a l e s
c o n s é q u e n c e s e n
sont, à
1 ‘ a m o n t , l a
c o n s t i t u t i o n d ’ u n l a c d e r e t e n u e d ’ e a u d o u c e , e t , a l ’ a v a l , l a
i imitation
s p a t i a l e d e l a z o n e s o u m i s e a u b a l a n c e m e n t d e s
marees.
La m o d i f i c a t i o n r a p i d e d e s c o n d i t i o n s d e m i l i e u d o i t
vraisembiablement e n g e n d r e r , p a r m i d ’ a u t r e s , u n c h a n g e m e n t d e s
ressources e x p l o i t a b l e s . AUSSI? e n c e q u i c o n c e r n e l e d o m a i n e
aqua’t 1 que, u n i n v e n t a i r e d e s n o u v e l l e s c o n d i t i o n s d e m i l i e u e t
u n e défin-itlon d e s v a r i a b l e s l e s p l u s s i g n i f i c a t i v e s d e s a
productivité
c o n s t i t u e n t - i 1s u n
prealable
i n d i s p e n s a b l e a
Loute
entreprIse d e g e s t i o n e t d e m i s e e n v a l e u r d e s e s
ressources.
Oans c e c o n t e x t e ,
l e CRODT(2) e t l’ORSTOM(3) o n t i n i t i é
c o n j o i n t e m e n t u n v a s t e p r o g r a m m e p l u r i d i s c i p l i n a i r e d ’ é t u d e d e
‘ia aua7it6 des eaux et du système-pêche du fleuve Sénegal.Plus
particul Terement,
e t à l ’ i n t e r f a c e d e s e s d e u x v o l e t s ,
UISE!
é t u d e d u p h y t o p l a n c t o n e n
r e l a t i o n a v e c l e s c o n d i t i o n s d e
rni 1 i eu
(hydre-bio-climat)
nous
é t é
c o n f i é e .
Nous
présenterons donc
i c i
s o u s f o r m e b r u t e
l ’ i n t é g r a l i t é des;
d o n n é e s c o l l e c t é e s
lors de cette étude et
r e l a t i v e s
aux.
descrïpteurs p r i n c i p a u x d e l ’ e n v i r o n n e m e n t a q u a t i q u e .
3. METHODES
L e p r é s e n t d o c u m e n t e s t c o n s t i t u é d e d e u x v o l e t s r e l a t i f s
aux
deux
phases
successives
dans
l e d é r o u l e m e n t d e n o s
t r a v a u x .
II)OMliS: O.rg*anlsatiorl pour la Mise en Valeur du Fleuve Sénégal.
I3JCRODT: Centre de Recherches Océanographiques de Dakar-Thiaro,ve,
(3)ORSTOM: Inski t u t F r a n ç a i s dt- Recherche Scientifique en [oopti;ration
pour 1 c? LGveloppemen f .
‘(UOLL~~U&?~~~,L a p asLJd 131 a p 2uaWow
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P
5
Podor
0 10
50 km
t
I
1
I
Figure
1:
Carte
des
stations
échantillonnées lors de la première phase de
notre étude, d'avril 1988 à juillet 1989.
LOCALISATION DES STATIONS
STATIONS
1
Gandiole
5
Saint-Louis
22
Diama
49
Djeuss
49
Gorom
58
Djoudj
77
Débi
85
CJ?OCO
101
Diaouar
119
Rong
129
Pomp. Gorom
132
Richard-TO11
163
Dagana
197
Doué
299
Podor
289
-II--._-
”
_
l es
s t a t i o n s
Djoudj ,
Gorom e
t
Croco.
f u r e n t
échmti 1 lonnées à p a r t i r d e p o n t s - b a r r a g e d e s t i n é s à e m p ê c h e r
l ’ é c o u l e m e n t d e s m a r i g o t s v e r s l e f l e u v e .
P o u r c e s t r o i s
stat I ons :
*’ amont”
s o u s - e n t e n d c o t e m a r i g o t e t
” ava 1 ”
COU5
f l e u v e a u n i v e a u d e l ’ o u v r a g e .
-~ l e s s t a t i o n s Djeuss e t D o u é f u r e n t é c h a n t i l l o n n e e s à
partir, d e p o n t f r a n c h i s s a n t c e s m a r i g o t s et/ou d e l a b e r g e .
D u r a n t l a
deuxiéme
p h a s e d e
n o t r e
é t u d e e t
sauf
‘rnd,ic,ation C:ontraire f i g u r a n t d a n s l e s t a b l e a u x d e resultats,
ï e s s t a t i o n s d e p r é l è v e m e n t s o n t é t é l e s s u i v a n t e s ( f i g u r e 21:
-~ l a s t a t i o n d e Gandiole f u t é c h a n t i l l o n n é e e n f a c e d u
p h a r e e t d a n s l e c h e n a l d u f l e u v e .
-’ ‘ l a s t a t i o n d e S a i n t - L o u i s é t a i t situee à e n v i r o n 3 0 0
mètres en amont du Pont Faidherbe et dans le chenal du fleuve.
-’ Diama a v a l é t a i t é c h a n t i l l o n n é a u b o u t d e la d i g u e
s é p a r a n t l ’ é c l u s e d u b a r r a g e s a u f p o u r l e prélévement, m a r q u é
d ’ u n * d a n s l e s t a b l e a u x d e p r é l è v e m e n t s ( p r o f o n d e u r > 5 m)
q u i a é t è f a i t à c o t é d e l a b a l i s e C h l o é .
Les p r é l è v e m e n t s o n t é t é f a i t s a v e c u n e b o u t e i l l e N i s k i n
d e 1,s l i t r e s .
Dans la. premier-e série de campagnes
l a conduet,ivité a
@té m e s u r é e s u r l e t e r r a i n avec u n conducCimètre. E n a v a l d u
b a r r a g e d e
D?ama o u
l ’ i n f l u e n c e d u
m i l i e u
marin
e s t
3 mportante,
c e t t e c o n d u c t i v i t é a é t é t r a n s f o r m e e e n s a l i n i t é à
p a r t i r d e s t a b l e s d e c o n v e r s i o n d e 1’UNESCO.
D a n s l a deuxieme s é r i e d e c a m p a g n e s , l a s a l i n i t é a é t é
mesuree a u
l a b o r a t o i r e a v e c u n s a l i n o m è t r e T . S . K .
TSUNUMI
SEIKI E-202.
N o u s a v o n s e m p l o y é d e s t h e r m o m è t r e s a u m e r c u r e e t d e s
s o n d e s é l e c t r i q u e s a v e c tables d e 5 a 1 0 m è t r e s .
7
Dakar- Bango
L a n g u e de
Barbarie
- 2 Km
- b a r r a g e
181 P o i n t d e pr~lèvsment
8
L.a t r a n s p a r e n c e a é t é eval u é e a u m o y e n d ’ u n d i s q u e d e
Secch’i de 30 cm de diamétre.
L e s M E S o n t é t é o b t e n u e s p a r f i l t r a t i o n d ’ u n v o l u m e c o n n u
d ’ e a u ( d e 5 0 a 2 5 0 m l ) s u r f i ltres W h a t m a n GF/C e t pesee d e
ceux-ci
apr&s p a s s a g e
a l’étuve
(1 heure
à 100°C) et au
d i s s é c a t e u r .
A p r è s f i l t r a t i o n s u r W h a t m a n GF/C, l e s é c h a n t i l l o n s o n t
é t é
f:‘ixes
( e m p o i s o n n é s ) a u
c h l o r o f o r m e (I/l00 f i n a l 1 et,
conserves à 1 ‘obscurite.
Dans 1 a. deux iéme série de campagnes (a parti r de novembre
89) l e s é c h a n t i l l o n s o n t d e p l u s 6th c o n s e r v e s a u f r a i s .
D a n s l a p r e m i è r e s é r i e d e c a m p a g n e s l e s a n a l y s e s o n t éte
f a i t e s
au
l a b o r a t o i r e d u CRODT, a v e c u n s p e c t r o p h o t o m è t r e
B A U S C H & LOMB 2000.
L e s t e c h n i q u e s d ’ a n a l y s e s e m p l o y é e s o n t
éte t i r é e s d e s t r a v a u x d e S t r i c k l a n d e t Parsons
(1972),
G r a s s h o f f et a7 (19821,
A m i n o t e t C h a u s s e p i e d ( 1 9 8 3 f > e t d e
Golterman e t a 7
(1978).
Les
protocoles
d e c e s
anal yses
figurent en annexe de ce document.
D u r a n t l a deuxieme s é r i e d e c a m p a g n e s l e s a n a l y s e s o n t
et& f a r t e s a u l a b o r a t o i r e d e c h i m i e d e l’ORSTOM, a v e c u n
autoanal yseur
TECHNICON II.
L e s m a n i f o l d s u t i l i s e s o n t éte
r é a l i s é s a p a r t i r d e s t r a v a u x d e T r e g u e r e t L e C o r r e ( 1 9 7 4 ) e t
d e Oudot e t M o n t e 1 (1988).
L e d o s a g e d e l a c h l o r o p h y l l e t o t a l e a é t é f a i t e e n
r o u t i n e p a r f i l t r a t i o n s u r f i l t r e s e n f i b r e d e v e r r e ( W h a t m a n
GF/C f - e x t r a c t i o n a u m e t h a n o l e t f l u o r i m é t r i e .
L e s v o l u m e s f i l t r e s é t a i e n t c o m p r i s e n t r e 5 0 e t 2 5 0 r n l .
Les
f i l tres
o n t eté c o n s e r v e s à l ’ o b s c u r i t é e t a u f r o i d
( e n v i r o n O:C s u r l e t e r r a i n e t c o n g é l a t i o n a - 1 5 ° C d e r e t o u r
a u l a b o r a t o i r e ) .
L e dosa.ge a été fait avec un f luorimètre TURNER 111 a p r è s
e x t r a c t i o n a u m e t h a n o l à 950/0.
Nous n’avons pas tenu compte des phéopigments.
9
bans l a d e u x i è m e p a r t i e d e n o t r e é t u d e ,
1 a MOI1 a éte
Gvaluee d e f a ç o n r e l a t i v e p a r m e s u r e d e l ’ a b s o r p t i o n a 2 5 4 n m
en cuve de 1 cm. C e t t e t e c h n i q u e a é t é t i r é e d e s t r a v a u x d e
Gadel e t T e x i e r ( 1 9 8 6 ) e t d e P a g e s e t G a d e l ( a p a r a î t r e ) .
Les &hanti 1 ions,
après
f i l t r a t i o n
sur
Whatman
GF/C
é t a i e n t f i x é s
au
chloroforme
à lO/o
f i n a l e t c o n s e r v e s à
l ’ a b r i d e l a . l u m i è r e .
II. RESULTATS
t.. ’ ensemble des données
r é c o l t é e s e s t p r é s e n t e s o u s
f a
f o r m e d e d e u x s é r i e s d e t a b l e a u x
correspondants
a u x d e u x
phases de notre étude:
“.~ SERIE 1 :
d o n n é e s r e c u e i l l i e s d ’ a v r i l 1 9 8 8 à jui 1 l e t
1 9 8 9 l o r s d e l ’ é t u d e d e l ’ e n s e m b l e d e l a z o n e d’influente d u
barrage de Ciama (de Podor à l’embouchure).
I’I S E R I E 2 :
d o n n é e s r e c u e i l l i e s d e n o v e m b r e 1 9 8 9 à j u i n
‘1990 l o r s d u s u i v i h e b d o m a d a i r e d e l ’ e s t u a i r e
DONNEES RECUEILLIES D'AVRIL 1988 A JUILLET
i989 LORS DE L'ETUDE DE L'ENSEMBLE DE LA ZONE
D'INFLUENCE DU BARRAGE DE DIAMA.
SYMBOLES UTILISES
---
DESCRIPTEUR
SYMBOLE
UNITE
-
CHLOROPHYLLE
CHI
pG.L-1
NITRATES + NITRITES
N
pATG.L-1
PHOSPHATES REACTIFS DISSOtlS
P
pATG.L--1
SILICATES
SI
pATG.L-1
MATIERES EN SUSPENSION
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1 SERIE 2 1
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DONNEES RECUEILLIES DE NOVEMBRE 1989 A JUIN
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8 ?réié,ement (dit 2. c8t.l de ia balise CHLOE.
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35
CONCLUSION
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avons
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donnees
r e c u e i l l i e s
lors de notre étude de la biomasse
phytop 1 ancton 1 que
en
r e l a t i o n a v e c l e s c o n d i t i o n s d e m i l i e u
d a n s l a z o n e d’influente d u b a r r a g e d e Diama n o u v e l l e m e n t
é d i f i e . C e s
d o n n é e s n e
p r é t e n d e n t
pas
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e x h a u s t i v e
des
d e s c r i p t e u r s
des
écosystèmes
l a c u s t r e s e t
estuariens d e l a
Basse
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u
Fleuve
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n
particul ier.,
l e s
r é s u l t a t s
de la
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phase
d ‘ e c h a n t i 1 lonnage n e p e r m e t t r o n t d e b r o s s e r
qu’un
t a b l e a u
s c h é m a t i q u e d u f o n c t i o n n e m e n t d e c e s é c o s y s t è m e s .
D ’ a u t r e
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l e l i e n a v e c l a p r o d u c t i o n s e c o n d a i r e e t l e s a u t r e s
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const i tuent
n é a n m o i n s u n
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o r i g i n a l ,
u t i l i s a b l e e t
va’aorisable l o r s d e l a c o m p a r a i s o n
à d ’ a u t r e s é c o s y s t è m e s
semb 1 ab 1 es,
e t e x p l o i t a b l e e n
l i a i s o n a v e c l e s resultats d e s
t r a v a u x s i m u l t a n é s m e n é s p a r l e s h y d r o l o g u e s e t g é o c h i m i s t e s .
36
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TREGUER (P.), LE CORRE (P.),
lc)74- Manuel d'analyse des sels
nutritifs
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l'eau de
mer
(utilisation de
l'autoanalyzer Technican II). Université de Bretagne
Occidentale: 66 p.
1 ANNEXES 1
PROTOCOLES DES ANALYSES DES SELS NUTRITIFS
EFFECTUEES AU LABORATOIRE DE CHIMIE DU CRODT.
.DC&AGE DES NITRITFZ
1. PRINCIPE DE LA METHODE
Les ions nitrites forment un diazoïque avec la sulfanilamide
en
milieu acide (PH < Z), puis ce diazoïque réagit avec le
N-naphtyl-éthylènediamine pour former un composé rouge.
Celui-ci
absorbe à la longueur d'onde de 543 nm.
2. APPAREILLAGE
Spectrophotomètre BAUSCH & LOMB 2000 avec cuve de 10 cm de
trajet optique.
3. REACTIFS
3.1. Rl.: SOLUTION DE SULFANILAMIDE
Dans une fiole de 500 ml:
- Diluer 50 ml d'acide chlorhydrique concentré (d = 1.19)
dans environ 300 ml d‘eau démineralisee.
- Dissoudre 5
g de sulfanilamide (CsHaN202s)
dans cette
solution.
- Compléter à 500 ml avec de l'eau deminéralisée.
Solution stable plusieurs mois.
3.2. R2: SOLUTION DE N-NAPHTYL
Dissoudre 0,5
g de
N-naphtyl-1
éthylènediamine
dichlorhydrate (CloH?NHCHzCHzNHz,
ZHCl, CH3OH) dans 500 ml d'eau
deminéralisée.
Solution à conserver au froid et à l'abri de la lumière. La
renouveler tous les mois ou dés qu'il y a changement de
coloration.
3.3. SOLUTION ETALON PRIMAIRE DE NITRITE (5 uatg N-N02 / ml)
Dissoudre 0,345 g de nitrite de sodium (NaNOz) dans 1 1
d'eau déminéralisée et ajouter 1 ml de chloroforme.
Cette solution,
conservée au
froid et à l'abri de la
lumière est stable 2 mois.
3-4. SOLUTION ETALON SECONDAIRE (0,05 uatg N-NO2 / ml)
Diluer 100 fois la solution primaire.
Cette solution ne se conserve pas et doit être préparée
extemporan6ment.
39
4. MODE OPERATOIRE
4.1. PROCESSUS GENERAL
Dans 50 ml d'eau à analyser:
- Ajouter 1 ml du réactif 1 et melanger.
- Laisser reposer 5 mn.
- Ajouter 1 ml du réactif 2 et mélanger.
- Attendre au moins 15 mn le développement de la coloration
mais pas plus de lh 30.
- Mesurer l'absorbante en
cuve de 10 cm à 543 nm, en
prenant de l'eau déminéralisée comme référence:
soit A cette
valeur.
4.2. GAMME ETALON
Dans des fioles de 50 ml introduire O,l- 0,2- 0,5- 0,7-
1 ml de la solution étalon secondaire et compléter à 50 ml avec
de l'eau deminéralisée afin d'obtenir une gamme de concentration
de O,l- O,2- 0,5- O,?- 1 uatg N-NO2 / 1.
Faire l'analyse de chacun des étalons en suivant le
processus géneral du paragraphe 4.1.
On obtient une droite d'étalonnage donnant l'absorbante en
fonction de la concentration. Soit P la pente de cette droite.
4.3. BLANCS
4.3.1. Blanc & turbidité
C'est l'absorbante de l'échantillon brut mesurée par
rapport à l'eau déminéralisée: soit Bt cette valeur.
4.3.2. Blanc des réactifs
C'est l'absorbante produite par les réactifs eux mêmes.
Prendre 50 ml d'eau déminéralisée et y ajouter les
réactifs
comme pour une
analyse normale (% 4.1.). Faire 3
déterminations et mesurer l'absorbante par rapport à l'eau
déminéralisée:
soit Br la moyenne de ces valeurs.
5. CALCULS
Soit:
- A l'absorbante de l'échantillon traité,
- Bt le blanc de turbidité,
- Br l'absorbante moyenne des blancs réactifs,
- P
la pente de
la droite d'étalonnage
(absorbante en
fonction de la concentration).
L'absorbante nette est: D = A - Bt - Br
La concentration en uatg N-N02 / 1 est: C = D/P
DOSAGE DES NITRATES ET DES NITRITES
1. PRINCIPE DE LA METHODE
Les ions nitrates
sont réduits en ions
nitrites par contact
avec des copeaux de cadmium en présence de chlorure d'ammonium.
Les ions nitrites ainsi obtenus et les nitrites également
présents dans
l'kzhantillon forment un diazoïque
avec la
sulfanilamide en milieu
acide, puis ce diazoïque
réagit avec le
N-naphtyl-éthylènediamine pour former un composé rouge. Celui-ci
absorbe à la longueur d'onde de 543 nm.
2. APPAREILLAGE
Spectrophotomètre BAUSCH & LOMB 2000 avec cuve de 1 cm de
trajet optique.
Agitateur avec tubes de 10 ml à bouchons vissés.
3. REACTIFS
3.1. Rl: SOLUTION DE SULFANILAMIDE
Même reactif que pour le dosage des nitrites (§ 3.1.).
3.2. R2: SOLUTION DE N-NAPHTYL
Même réactif que pour le dosage des nitrites (13 3.2.).
3.3. SOLUTION DE CHLORURE D'AMMONIUM A 250 g/l
Dissoudre 250 g de chlorure d'ammonium dans 1 1 d'eau
déminéralisée.
3.4. SOLUTION ETALON PRIMAIRE DE NITRATE (10 uatg N-NO3 / ml)
Dissoudre 1,012 g de nitrate de potassium (KNO3)
dans 1 1
d'eau déminèralisée et ajouter 1 ml de chloroforme.
Cette solution,
Conserv&e au
froid et & l'abri de la
lumière est stable plusieurs mois.
3.5. SOLUTION ETALON SECONDAIRE
Diluer 100 fois la solution primaire.
Cette solution ne se conserve pas et doit &re préparée
extemporanément.
41
4. PREPARATION DU CADMIUM
4.1. REACTIFS
4.1.1. Solution de chlorure d'ammonium Q,m
Dissoudre 5,345 g de chlorure d'ammonium (MH4Cl) dans 1 1
d'eau déminéralisée.
4.1.2. Solution & chlorure mercurisue
Préparer une solution à 10,lO g de chlorure mercurique
(HgClz) par litre dans de l'eau déminéralisée.
4.1.3. Solution d'acide chlorhydrique 2N
Diluer 32 ml d'acide chlorhydrique concentré (d = 1,19)
dans 200 ml d'eau déminéralisée.
4.1.4. Solution d'acide nitrique Q,a
Diluer 2,6 ml d'acide nitrique (d =
1,50) dans 200 ml
d'eau déminéralisée.
4.1.5. Solution de sulfate de cuivre Q,Q&J
Dissoudre 4
g de sulfate de cuivre fCuSO4, 5Hzû) dans
200 ml d'eau déminéralisée.
4.2. PREPARATION DU CADMIUM
Deux méthodes ont été utilisées:
4.2.1. Méthode 1.
- Prendre environ 50 g de cadmium en grains de 0.5 à 2 mm
de diamètre.
- Traiter le cadmium par environ 100 ml de solution de
chlorure mercurique en agitant 3 mn.
- Laver abondamment à l'eau déminéralisée jusqu'à ce
qu'il n'y ait plus de particules fines en suspension.
- Conserver le
cadmium ainsi traité dans la solution de
chlorure d'ammonium 0,lM.
4.2.2. Méthode 2
- Prendre environ 50 g de cadmium en grains de 0.5 à 2 mm
de diamètre.
- Laver
à l'acide chlorhydrique
2N puis rincer à l'eau
déminéralisée.
- Laver à l'acide nitrique 0,3N puis rincer à l'eau
déminéralisée.
- Traiter le cadmium par environ 100 ml de solution de
sulfate de
cuivre en agitant
jusqu'au virage de la
solution du
bleu au noir.
- Laver abondamment à l'eau déminéralisée jusqu'à ce
qu'il n'y ait plus de particules fines en suspension.
- Conserver le
cadmium ainsi traité dans la solution de
chlorure d'ammonium 0,lM.
42
5.1. PROCESSUS GENERAL
Dans un tube de 10 ml a bouchon vis&:
- Mwttre 5 ml d'eau à analyser.
- Ajouter environ 1 g de cadmium traité.
- Ajouter O,l ml de solution de chlorure d'ammonium à 250
a/1 '
- Agiter pendant 30 mn.
- Prélever une aliquote de 2,5 ml de cette solution.
Le processus
est alors identique
à celui utilistz:
pour le
dosage des ions nitrites. Dans cette aliquote de 2,5 ml:
- Ajouter O,O5 ml du rbactif 1 et melanger.
- Laisser reposer 5 mn.
- Ajouter O,O5 ml de réactif 2 et mélanger.
- Attendre au moins 15 mn le développement de la coloration
mais pas plus de ih 30.
- Mesurer l'absorbante en cuve de 1 cm à 543 nm, en prenant
de l'eau dkminéralisée comme réfkrence: soit A cette valeur.
5.2. GAMME ETALON
Dans des fioles de 50 ml introduire 0,5- l- 2- 3- 4 ml de
la solution étalon secondaire et compléter à 50 ml avec de l'eau
déminéralisée afin d'obtenir une gamme de concentration de l- 2-
4- 6- 8 uatg N-NOa / 1.
Faire l'analyse de chacun des étalons en suivant le
processus général du paragraphe 5.1.
On obtient une droite d'étalonnage donnant l'absorbante en
fonction de la concentration. Soit P la pente de cette droite.
5.3. BLANCS
5.3.1. Blanc de turbidité
C'est l'absorbante de l'échantillon brut mesurée par
rapport à l'eau déminéralisée: soit Bt cette valeur.
5.3.2. Blanc des réactifs
C'est l'absorbante produite par les réactifs eux mêmes.
Prendre 5 ml d'eau déminéralisée et suivre le processus
général (§ 5.1.) comme pour une analyse normale. Faire 3
déterminations et mesurer l'absorbante par rapport à l'eau
déminéralisée:
soit Br la moyenne de ces valeurs.
43
6. CALCUL
Soit:
- A l'absorbante de l'échantillon traité,
- Bt le blanc de turbidité,
- Br l'absorbante moyenne des blancs réactifs,
- P la pente de la droite d'étalonnage (absorbante en
fonction de la concentration).
L'absorbante nette est: D = A - Bt - Br
La concentration en uatg N-NO3 / 1 est: C q D/P
44
DOSAGE DES SILICATES
1. PRINCIPE DE LA METHODE
Les
silicates réagissent
avec le
molybdate pour
former un
complexe
silice-molybdique
jaune.
Les phosphates réagissent
également
avec le molybdate mais les complexes formés sont
détruits par l'acide oxalique. Le complexe silice-molybdique est
réduit par le
métol en
un composé
bleu qui
permet un dosage
colorimètrique.
2. APPAREILLAGE
Spectrophotomètre BAUSCH & LOMB 2000 avec cuve de 1 cm de
trajet optique.
3. REACTIFS
3.1. Ri: MOLYBDATE
Dans une fiole de 500 ml:
- Dissoudre 4 g de paramolybdate
d'ammonium (NH4 )6 M07024,
4H2G dans environ 300 ml d'eau distillée.
- Ajouter 12 ml d'acide chlorhydrique concentré.
- Compléter à 500 ml avec de l'eau distillée.
Cette solution peut se conserver en flacon de polyéthylène
à l'abri de la lumière.
3.2. SOLUTION DE METOL-SULFITE
Dans une fiole de 500 ml:
- Dissoudre 6 g de sulfite de sodium anhydre (NazSOa).
- Ajouter 10 g de métol (sulfate de p-méthylaminophenol,
Ch-tH2oI'hOsS).
- Compléter à 500 ml avec de l'eau distillée.
Cette solution se détériore en deux à trois semaines en
prenant une couleur sombre.
3.3. SOLUTION D'ACIDE OXALIQUE
Dissoudre 50 g d'acide oxalique (C2H204, 2H20) dans 500 ml
d'eau distillée.
Cette solution reste stable indefiniment.
45
3.4. SOLUTION D'ACIDE SULFURIQUE A 50%
Ajouter 250 ml d'acide sulfurique concentré (d=l,84) à 250
ml d'eau diçtillee.
3.5. R2: REDUCTEUR
Pour obtenir 300 ml de ce réactif, mélanger dans l'ordre
les solutions suivantes:
- 100 ml de solution de métol-sulfite.
- 60 ml de solution d'acide oxalique.
- 60 ml d'acide sulfurique à 50%.
- 80 ml d'eau distillée.
Cette solution doit être préparée extemporanément.
3.6. SOLUTION ETALON PRIMAIRE DE SILICIUM (5 uatg Si / ml)
Dissoudre 0,960 g d'hexafluorosilicate de sodium (NazSiFe)
dans 1 1 d'eau distillée (cette dissolution peut être lente aussi
est il conseillé d'écraser les agrégats dans un bécher en
plastique afin de l'accélérer), et ajouter 1 ml de chloroforme.
Cette solution, conservée en flacon plastique au froid et à
l'abri de la lumière est stable plusieurs mois.
3.'7. SOLUTION ETALON SECONDAIRE (0,s uatg Si / ml)
Diluer 10 fois la solution primaire.
Cette solution ne se conserve pas et doit être préparée
extemporanément.
4. MODE OPERATOIRE
4.1. PROCESSUS GENERAL
En amont du barrage de Diama,
les
concentrations en
silicate étant élevées, chaque échantillon a dû être dilué 5 fois
avec de l'eau distillée.
Dans un tube de 10 ml:
- Introduire 2 ml de réactif 1.
- Ajouter 5 ml d'échantillon dilué et mélanger.
- Laisser réagir 10 mn. Ce temps de réaction doit rester le
même pour tous les échantillons et étalons à analyser.
- Ajouter 3 ml de réactif 2 et mélanger.
- Attendre 2 heures et mesurer l'absorbante en cuve de 1 cm
à 81.0 nm en prenant l'eau distillée comme référence: Soit A cette
v a l e u r .
4.2. GAMME ETALON
Dans des fioles de 50 ml introduire i- 2- 3- 4 - 5 ml de
solution étalon
secondaire et
compléter à 50
ml avec de l'eau
distillée afin d'obtenir une gamme de concentration de 10- 20-
30- 40- 50 uatg Si / 1.
Faire l'analyse de chacun des étalons en suivant le
processus généxal du paragraphe 4.1. (sans la dilution).
On obtient une droite d'étalonnage donnant l'absorbante en
fonction de la concentration. Soit P la pente de cette droite.
4.3. BLANCS
4.3.1. Blanc & turbidité
C'est l'absorbante de l'échantillon dilué par rapport à
l'eau distillée: soit Bt cette valeur.
4.3.2. Blanc des réactifs
C'est l'absorbante produite par les réactifs eux mêmes.
Prendre 5 ml d'eau distillée et y ajouter les réactifs
comme pour une
analyse normale (§ 4.1.).
Faire 3 déterminations
et mesurer l'absorbante par rapport à l'eau distillée: soit Br la
moyenne de ces valeurs.
5. CALCULS
Soit:
- A l'absorbante de l'échantillon traité (dilué 5 fois),
- Bt le blanc de turbidité,
- Br le blanc réactif moyen,
- P la pente de la droite d'étalonnage
(absorbante en
fonction de la concerrtratior~).
L'absorbante nette est: D = A - Bt - Br
La concentration en uatg Si / 1 est: C q (D/P)M
47
DOSAGE DU PHOSPHOBE MIWERAL DISSOUS
1. PRINCIPE DE LA METHODE
Les ions
phosphates réagissent avec le molybdate d'ammonium,
en
présence
d'antimoine,
pour
former un
complexe
phospho-molybdique
jaune.
Celui ci
est
réduit
par l'acide
ascorbique en un
composé
bleu qui
permet un
dosage
calorimétrique.
2.. APPAREILLAGE
Spectrophotom&tre BAUSCH 8~ LOMB 2000 avec cuve de 10 cm de
trajet optique.
3. REACTIFS
3.1. MOLYBDATE
Dissoudre 15 g de paramolybdate d'ammonium
(NH4 )6kt07&24,
4820 dans 500 ml d'eau déminéralisée.
Cette solution peut se conserver en flacon polyéthylène à
l'abri de la lumike.
3.2. SOLUTION D'ACIDE SULFURIQUE
Ajouter, avec précaution, 140 ml d'acide sulfurique (densité
1,84) dans 900 ml d‘eau déminéralisée.
3.3. SOLUTION D'ACIDE ASCORBIQUE
Dissoudre 27 g
d'acide ascorbique CsHsOs dans 500 ml d'eau
déminéralisée.
Cette solution
peut se
conserver
plusieurs
mois au
congélateur.
3.4. SOLUTION DE TARTRATE
Dissoudre
0334
g
d'oxytartrate de
potassium et
d'antimoine(II1) K(SbO)C4H406 dans 250 ml d'eau déminéralisée, en
chauffant si nécessaire.
Cette solution
peut se
conserver
plusieurs
mois au
réfrigérateur.
48
3.5. MELANGE- REACTIF
Mélanger les
réactifs
ci-dessus dans
les proportions
suivantes:
- 100 ml de solution de molybdate d'ammonium,
- 250 ml de solution d'acide sulfurique,
- 100 ml de solution d'acide ascorbique,
- 50 ml de solution de tartrate.
Ce mélange ne se conserve pas plus de 6 heures et doit être
préparé extemporanément.
3.6. SOLUTION ETALON PRIMAIRE DE PHOSPHATE (5 uatg de P / ml}
Apres
séchage & l'étuve et passage au dissecateur, peser
0,6805 g de dihydrogénophosphate de potassium anhydre (!XHzPOa).
Dissoudre celui ci dans 1 1 d‘eau déminéralisée et ajouter 1 ml
de chloroforme.
Cette solution
peut se
conserver
plusieurs
mois au
réfrigérateur.
3.7. SOLUTION ETALON SECONDAIRE DE PHOSPHATE (0,05 uatg P / ml)
Diluer 100 fois la solution primaire.
Cette solution ne se conserve
pas et doit être préparée
extemporanément.
4. MODE OPERATOIRE
4.1. PROCESSUS GENERAL
Dans 50 ml d'eau à analyser:
- Ajouter 5 ml de mélange réactif et homogénéiser,
- Attendre 1 heure le développement de la coloration,
- Mesurer l'absorbante en cuve de 10 cm à 827 nm (le maximum
d'absorption est à 885 nm, la mesure à 827 nm est due aux limites
de notre appareil), en prenant
de l'eau déminkalisée comme
réference: soit A cette valeur.
4.2. GAMME ETALON
Dans des fioles de 50 ml introduire 0,5- i- 1,5- 2- 3 ml de
la solution étalon secondaire et compléter à 50 ml avec de l'eau
déminéralisée afin d'obtenir une gamme de concentration de 0,5-
1- 1,5- 2- 3 uatg P-P04 / 1.
Faire l'analyse de chacun
des
étalons en
suivant le
processus général du paragraphe 4.1.
On obtient
une droite d'étalonnage donnant
l'absorbante en
fonction de la concentration. Soit P la pente de cette droite.
49
4.3. BLANCS
4.3.1. Blanc & turbidité
C'est l'absorbante de l'echantillon brut mesurée par
rapport à l'eau démineralisée: soit Bt cette valeur.
4.3.2. Blanc des reactifs
C'est l'absorbante produite par les réactifs eux mêmes.
Prendre 50 ml d'eau déminéralisée et y ajouter les
réactifs
comme
pour
une
analyse normale
(§ 4.1.). Faire 3
déterminations et mesurer l'absorbante par rapport à l'eau
déminéralisée:
soit Br la moyenne de ces valeurs.
5. CALCULS
Soit:
- A l'absorbante de l'échantillon traité,
- Bt le blanc de turbidité,
- Br l'absorbante moyenne des blancs réactifs,
- P
la pente de
la droite d'étalonnage
(absorbante en
fonction de la concentration).
L'absorbante nette est: D = A - Bt - Br
La concentration en uatg P-P04 / 1 est: C = D/P
D,
DANS LA ZONE D'INFLUENCE DU
CORBIN
BARRAGE DE DIAMA : COMPILATION
P, CECCHI
DES DONNEES RECUEILLIES D'AVRIL
1988 A JUIN 1990
- .--l.l-
A R C H I V E
CENTRE IIE RECHERCHES OCÉANOGRAPHIQUES DE DAKAR - TIAROYE
No 185
* I N S T I T U T S É N É G A L A I S D E R E C H E R C H E S A G R I C O L E S *
M A R S 1 9 9 1
H~DROBIOCLIMAT DU FLEUVE SENEGAL DANS LA ZONE D’INFLUENCE
DU BARRAGE DE DIAMA : COMPILATION DES DONNEES
RECUEILLIES D’AVRIL 1988 A JUIN 1990,
D. CORBIN et P. CECCHI
i.-es d o n n é e s p r é s e n t é e s f u r e n t r e c u e i l l i e s d a n s l e c a d r e
d e l ’ é t u d e d e l a v a r i a b i l i t é d e l ’ h y d r o b i o c l i m a t d a n s ‘ l a B a s s e
V a l l&e d u
Fleuve
S é n é g a l e n
r e l a t i o n
avec
1 ‘ é d i f i c a t i o n
récente d u b a r r a g e a n t i - s e l d e Diama.
L e s m é t h o d e s employdes
sont
b r i è v e m e n t r a p p e l é e s e t
l e s r é s u l t a t s d e 4 8 c a m p a g n e s
ci’ échant? 1 lonnage
sont
compi lés
pour
q u e l q u e s desc;ripteurs
p r i n c i p a u x : s a l i n i t é , c o n d u c t i v i t é , t e m p é r a t u r e , t r a n s p a r e n c e ,
m a t i é r e s e n s u s p e n s i o n ,
s e l s n u t r i t i f s ( n i t r i t e s ,
n i t r a t e s ,
phosphates
r é a c t i f s d i s s o u s ,
s i l i c a t e s ) ,
c h l o r o p h y l l e t o t a l e
e t m a t i è r e o r g a n i q u e d i s s o u t e (A254).
N O U S
exprimons
notre
r e c o n n a i s s a n c e à
M o n s i e u r J . L .
DUPRE\\‘,
r e s p o n s a b l e d u l a b o r a t o i r e d e c h i m i e O R S T O M d e D a k a r ,
p o u r i’a,rde t e c h n i q u e q u ’ i l a apportbe à l a réalisation d e c e
t r a v a i 1 .
TABLE DES MATIERES
1. METHO#ES........,..........,.............,,.........,3
1 . 1 . B r g a r i s a t i o n e t c h r o n o l o g i e d e s t r a v a u x . . . . . . . . . 3
1 .2. C h o i x d e s s t a t i o n s . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
. . . 4
1 . 3 . Prélèvements..................................~ .6
X . 4 . Conductivite e t s a l i n i t é . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
. . . 6
1 . 5 . Température.................................~.~ .6
1.5, Transparençe...............................~
. ...8
1.7. Matières en suspension . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
. . . 8
1 . 8 . S e l s n u t r i t i f s . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
..~.8
X . 8 . 1 ,
Conservation . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
. . . 8
1.8.2, Dosages . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
..~..8
1.9. Chlorophylle totale . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
. . . 8
I.lO.Matière organique dissoute ......................9
I I , RESULTATS.........................................~..9
S E R I E : 1 : D o n n é e s r e c u e i l l i e s d ’ a v r i l 1 9 8 8 a
j u i l l e t 1 9 8 9
l o r s d e l’etude d e
l ’ e n s e m b l e d e l a z o n e d’influente
du barrage de Diama...................,...lO
SERIE: 2: Données
r e c u e i l l i e s d e n o v e m b r e
1 8 8 9 à j u i n 1 9 9 0
l o r s d u s u i v i
h e b d o r n a d a i r e d e 1 ‘ e s t u a i r e d u
f l e u v e S é n é g a l . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 2 0
ANNEXES: Protocoles des
a n a l y s e s d e s s e l s
n u t r i t i f s e f f e c t u é e s a u l a b o r a t o i r e
de chimie du CRODT............................37
- Dosage des nitrites.........................3 8
-. Dosage des nitrates et des nitrites.........4 0
-’ D o s a g e d e s s i l i c a t e s . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 4 4
- D o s a g e d e s p h o s p h a t e s reactifs d i s s o u s . . . . . . 4 7
INTRODUCTION
Dans l e c a d r e d e l a m i s e e n v a l e u r d u f l e u v e S é n é g a l ,
d e u x b a r r a g e s o n t é t é é d i f i e s s u r l e f l e u v e p a r l e s é t a t s
r i v e r a i n s ,
s o u s 1 ‘ é g i d e d e I’OMVS(I ) . L e b a r r a g e a n t i - s e l d e
Diama r é p o n d a u x b e s o i n s d e s a m e n a g e u r s d e l i m i t e r l’-intrusion
s a l i n e d a n s l a B a s s e V a l l é e l o r s d e s é p i s o d e s a n n u e l s d e
t a r i s s e m e n t d e s é c o u l e m e n t s d u c o u r s d ’ e a u e n s a i s o n s è c h e .
Les
p r i n c i p a l e s
c o n s é q u e n c e s e n
sont, à
1 ‘ a m o n t , l a
c o n s t i t u t i o n d ’ u n l a c d e r e t e n u e d ’ e a u d o u c e , e t , a l ’ a v a l , l a
i imitation
s p a t i a l e d e l a z o n e s o u m i s e a u b a l a n c e m e n t d e s
marees.
La m o d i f i c a t i o n r a p i d e d e s c o n d i t i o n s d e m i l i e u d o i t
vraisembiablement e n g e n d r e r , p a r m i d ’ a u t r e s , u n c h a n g e m e n t d e s
ressources e x p l o i t a b l e s . AUSSI? e n c e q u i c o n c e r n e l e d o m a i n e
aqua’t 1 que, u n i n v e n t a i r e d e s n o u v e l l e s c o n d i t i o n s d e m i l i e u e t
u n e défin-itlon d e s v a r i a b l e s l e s p l u s s i g n i f i c a t i v e s d e s a
productivité
c o n s t i t u e n t - i 1s u n
prealable
i n d i s p e n s a b l e a
Loute
entreprIse d e g e s t i o n e t d e m i s e e n v a l e u r d e s e s
ressources.
Oans c e c o n t e x t e ,
l e CRODT(2) e t l’ORSTOM(3) o n t i n i t i é
c o n j o i n t e m e n t u n v a s t e p r o g r a m m e p l u r i d i s c i p l i n a i r e d ’ é t u d e d e
‘ia aua7it6 des eaux et du système-pêche du fleuve Sénegal.Plus
particul Terement,
e t à l ’ i n t e r f a c e d e s e s d e u x v o l e t s ,
UISE!
é t u d e d u p h y t o p l a n c t o n e n
r e l a t i o n a v e c l e s c o n d i t i o n s d e
rni 1 i eu
(hydre-bio-climat)
nous
é t é
c o n f i é e .
Nous
présenterons donc
i c i
s o u s f o r m e b r u t e
l ’ i n t é g r a l i t é des;
d o n n é e s c o l l e c t é e s
lors de cette étude et
r e l a t i v e s
aux.
descrïpteurs p r i n c i p a u x d e l ’ e n v i r o n n e m e n t a q u a t i q u e .
3. METHODES
L e p r é s e n t d o c u m e n t e s t c o n s t i t u é d e d e u x v o l e t s r e l a t i f s
aux
deux
phases
successives
dans
l e d é r o u l e m e n t d e n o s
t r a v a u x .
II)OMliS: O.rg*anlsatiorl pour la Mise en Valeur du Fleuve Sénégal.
I3JCRODT: Centre de Recherches Océanographiques de Dakar-Thiaro,ve,
(3)ORSTOM: Inski t u t F r a n ç a i s dt- Recherche Scientifique en [oopti;ration
pour 1 c? LGveloppemen f .
‘(UOLL~~U&?~~~,L a p asLJd 131 a p 2uaWow
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Sa L 1 a:,Jod
s a L sJaA aAnal. n p xnea s a p ?uaWalno4aJ n e S?U k~~sap alsitzdumd a p
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5
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1
I
Figure
1:
Carte
des
stations
échantillonnées lors de la première phase de
notre étude, d'avril 1988 à juillet 1989.
LOCALISATION DES STATIONS
STATIONS
1
Gandiole
5
Saint-Louis
22
Diama
49
Djeuss
49
Gorom
58
Djoudj
77
Débi
85
CJ?OCO
101
Diaouar
119
Rong
129
Pomp. Gorom
132
Richard-TO11
163
Dagana
197
Doué
299
Podor
289
-II--._-
”
_
l es
s t a t i o n s
Djoudj ,
Gorom e
t
Croco.
f u r e n t
échmti 1 lonnées à p a r t i r d e p o n t s - b a r r a g e d e s t i n é s à e m p ê c h e r
l ’ é c o u l e m e n t d e s m a r i g o t s v e r s l e f l e u v e .
P o u r c e s t r o i s
stat I ons :
*’ amont”
s o u s - e n t e n d c o t e m a r i g o t e t
” ava 1 ”
COU5
f l e u v e a u n i v e a u d e l ’ o u v r a g e .
-~ l e s s t a t i o n s Djeuss e t D o u é f u r e n t é c h a n t i l l o n n e e s à
partir, d e p o n t f r a n c h i s s a n t c e s m a r i g o t s et/ou d e l a b e r g e .
D u r a n t l a
deuxiéme
p h a s e d e
n o t r e
é t u d e e t
sauf
‘rnd,ic,ation C:ontraire f i g u r a n t d a n s l e s t a b l e a u x d e resultats,
ï e s s t a t i o n s d e p r é l è v e m e n t s o n t é t é l e s s u i v a n t e s ( f i g u r e 21:
-~ l a s t a t i o n d e Gandiole f u t é c h a n t i l l o n n é e e n f a c e d u
p h a r e e t d a n s l e c h e n a l d u f l e u v e .
-’ ‘ l a s t a t i o n d e S a i n t - L o u i s é t a i t situee à e n v i r o n 3 0 0
mètres en amont du Pont Faidherbe et dans le chenal du fleuve.
-’ Diama a v a l é t a i t é c h a n t i l l o n n é a u b o u t d e la d i g u e
s é p a r a n t l ’ é c l u s e d u b a r r a g e s a u f p o u r l e prélévement, m a r q u é
d ’ u n * d a n s l e s t a b l e a u x d e p r é l è v e m e n t s ( p r o f o n d e u r > 5 m)
q u i a é t è f a i t à c o t é d e l a b a l i s e C h l o é .
Les p r é l è v e m e n t s o n t é t é f a i t s a v e c u n e b o u t e i l l e N i s k i n
d e 1,s l i t r e s .
Dans la. premier-e série de campagnes
l a conduet,ivité a
@té m e s u r é e s u r l e t e r r a i n avec u n conducCimètre. E n a v a l d u
b a r r a g e d e
D?ama o u
l ’ i n f l u e n c e d u
m i l i e u
marin
e s t
3 mportante,
c e t t e c o n d u c t i v i t é a é t é t r a n s f o r m e e e n s a l i n i t é à
p a r t i r d e s t a b l e s d e c o n v e r s i o n d e 1’UNESCO.
D a n s l a deuxieme s é r i e d e c a m p a g n e s , l a s a l i n i t é a é t é
mesuree a u
l a b o r a t o i r e a v e c u n s a l i n o m è t r e T . S . K .
TSUNUMI
SEIKI E-202.
N o u s a v o n s e m p l o y é d e s t h e r m o m è t r e s a u m e r c u r e e t d e s
s o n d e s é l e c t r i q u e s a v e c tables d e 5 a 1 0 m è t r e s .
7
Dakar- Bango
L a n g u e de
Barbarie
- 2 Km
- b a r r a g e
181 P o i n t d e pr~lèvsment
8
L.a t r a n s p a r e n c e a é t é eval u é e a u m o y e n d ’ u n d i s q u e d e
Secch’i de 30 cm de diamétre.
L e s M E S o n t é t é o b t e n u e s p a r f i l t r a t i o n d ’ u n v o l u m e c o n n u
d ’ e a u ( d e 5 0 a 2 5 0 m l ) s u r f i ltres W h a t m a n GF/C e t pesee d e
ceux-ci
apr&s p a s s a g e
a l’étuve
(1 heure
à 100°C) et au
d i s s é c a t e u r .
A p r è s f i l t r a t i o n s u r W h a t m a n GF/C, l e s é c h a n t i l l o n s o n t
é t é
f:‘ixes
( e m p o i s o n n é s ) a u
c h l o r o f o r m e (I/l00 f i n a l 1 et,
conserves à 1 ‘obscurite.
Dans 1 a. deux iéme série de campagnes (a parti r de novembre
89) l e s é c h a n t i l l o n s o n t d e p l u s 6th c o n s e r v e s a u f r a i s .
D a n s l a p r e m i è r e s é r i e d e c a m p a g n e s l e s a n a l y s e s o n t éte
f a i t e s
au
l a b o r a t o i r e d u CRODT, a v e c u n s p e c t r o p h o t o m è t r e
B A U S C H & LOMB 2000.
L e s t e c h n i q u e s d ’ a n a l y s e s e m p l o y é e s o n t
éte t i r é e s d e s t r a v a u x d e S t r i c k l a n d e t Parsons
(1972),
G r a s s h o f f et a7 (19821,
A m i n o t e t C h a u s s e p i e d ( 1 9 8 3 f > e t d e
Golterman e t a 7
(1978).
Les
protocoles
d e c e s
anal yses
figurent en annexe de ce document.
D u r a n t l a deuxieme s é r i e d e c a m p a g n e s l e s a n a l y s e s o n t
et& f a r t e s a u l a b o r a t o i r e d e c h i m i e d e l’ORSTOM, a v e c u n
autoanal yseur
TECHNICON II.
L e s m a n i f o l d s u t i l i s e s o n t éte
r é a l i s é s a p a r t i r d e s t r a v a u x d e T r e g u e r e t L e C o r r e ( 1 9 7 4 ) e t
d e Oudot e t M o n t e 1 (1988).
L e d o s a g e d e l a c h l o r o p h y l l e t o t a l e a é t é f a i t e e n
r o u t i n e p a r f i l t r a t i o n s u r f i l t r e s e n f i b r e d e v e r r e ( W h a t m a n
GF/C f - e x t r a c t i o n a u m e t h a n o l e t f l u o r i m é t r i e .
L e s v o l u m e s f i l t r e s é t a i e n t c o m p r i s e n t r e 5 0 e t 2 5 0 r n l .
Les
f i l tres
o n t eté c o n s e r v e s à l ’ o b s c u r i t é e t a u f r o i d
( e n v i r o n O:C s u r l e t e r r a i n e t c o n g é l a t i o n a - 1 5 ° C d e r e t o u r
a u l a b o r a t o i r e ) .
L e dosa.ge a été fait avec un f luorimètre TURNER 111 a p r è s
e x t r a c t i o n a u m e t h a n o l à 950/0.
Nous n’avons pas tenu compte des phéopigments.
9
bans l a d e u x i è m e p a r t i e d e n o t r e é t u d e ,
1 a MOI1 a éte
Gvaluee d e f a ç o n r e l a t i v e p a r m e s u r e d e l ’ a b s o r p t i o n a 2 5 4 n m
en cuve de 1 cm. C e t t e t e c h n i q u e a é t é t i r é e d e s t r a v a u x d e
Gadel e t T e x i e r ( 1 9 8 6 ) e t d e P a g e s e t G a d e l ( a p a r a î t r e ) .
Les &hanti 1 ions,
après
f i l t r a t i o n
sur
Whatman
GF/C
é t a i e n t f i x é s
au
chloroforme
à lO/o
f i n a l e t c o n s e r v e s à
l ’ a b r i d e l a . l u m i è r e .
II. RESULTATS
t.. ’ ensemble des données
r é c o l t é e s e s t p r é s e n t e s o u s
f a
f o r m e d e d e u x s é r i e s d e t a b l e a u x
correspondants
a u x d e u x
phases de notre étude:
“.~ SERIE 1 :
d o n n é e s r e c u e i l l i e s d ’ a v r i l 1 9 8 8 à jui 1 l e t
1 9 8 9 l o r s d e l ’ é t u d e d e l ’ e n s e m b l e d e l a z o n e d’influente d u
barrage de Ciama (de Podor à l’embouchure).
I’I S E R I E 2 :
d o n n é e s r e c u e i l l i e s d e n o v e m b r e 1 9 8 9 à j u i n
‘1990 l o r s d u s u i v i h e b d o m a d a i r e d e l ’ e s t u a i r e
DONNEES RECUEILLIES D'AVRIL 1988 A JUILLET
i989 LORS DE L'ETUDE DE L'ENSEMBLE DE LA ZONE
D'INFLUENCE DU BARRAGE DE DIAMA.
SYMBOLES UTILISES
---
DESCRIPTEUR
SYMBOLE
UNITE
-
CHLOROPHYLLE
CHI
pG.L-1
NITRATES + NITRITES
N
pATG.L-1
PHOSPHATES REACTIFS DISSOtlS
P
pATG.L--1
SILICATES
SI
pATG.L-1
MATIERES EN SUSPENSION
MES
MG.L,--1
TRANSPARENCE (DISQUE DE SECCHX)
DS
CM
CONDUCTIVITE A 25 "C
c25
MS.CM--1
TEMPERATURE
T
c c
PROFONDEUR
Z
M
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20
1 SERIE 2 1
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DONNEES RECUEILLIES DE NOVEMBRE 1989 A JUIN
3990 LORS DU SUIVI HEBDOMADAIRE DE L'ESTUAIRE
DU FLEUVE SENEGAL.
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^ LE. sré!évements r i e SHIMT-LOilIS o n t é t é faits a p a r t i r d u q u a i tin f a c e d u peint de préléve@entr h a b i t u e l .
- LL preibmsd de Gk#DIOE a ht4 fait a partir du rivage en face du phare.
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8 ?réié,ement (dit 2. c8t.l de ia balise CHLOE.
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35
CONCLUSION
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avons
r e p r i s d a n s c e d o c u m e n t l ’ i n t é g r a l i t é d e s
donnees
r e c u e i l l i e s
lors de notre étude de la biomasse
phytop 1 ancton 1 que
en
r e l a t i o n a v e c l e s c o n d i t i o n s d e m i l i e u
d a n s l a z o n e d’influente d u b a r r a g e d e Diama n o u v e l l e m e n t
é d i f i e . C e s
d o n n é e s n e
p r é t e n d e n t
pas
h une
c o u v e r t u r e
e x h a u s t i v e
des
d e s c r i p t e u r s
des
écosystèmes
l a c u s t r e s e t
estuariens d e l a
Basse
Vallee d
u
Fleuve
Senégal a E
n
particul ier.,
l e s
r é s u l t a t s
de la
premier-e
phase
d ‘ e c h a n t i 1 lonnage n e p e r m e t t r o n t d e b r o s s e r
qu’un
t a b l e a u
s c h é m a t i q u e d u f o n c t i o n n e m e n t d e c e s é c o s y s t è m e s .
D ’ a u t r e
oar-t,
l e l i e n a v e c l a p r o d u c t i o n s e c o n d a i r e e t l e s a u t r e s
or:helons t r o p h i q u e s s u p é r i e u r s n ’ a p a s é t é a b o r d e . C e s d o n n é e s
const i tuent
n é a n m o i n s u n
” fonds”
o r i g i n a l ,
u t i l i s a b l e e t
va’aorisable l o r s d e l a c o m p a r a i s o n
à d ’ a u t r e s é c o s y s t è m e s
semb 1 ab 1 es,
e t e x p l o i t a b l e e n
l i a i s o n a v e c l e s resultats d e s
t r a v a u x s i m u l t a n é s m e n é s p a r l e s h y d r o l o g u e s e t g é o c h i m i s t e s .
36
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l'eau de
mer
(utilisation de
l'autoanalyzer Technican II). Université de Bretagne
Occidentale: 66 p.
1 ANNEXES 1
PROTOCOLES DES ANALYSES DES SELS NUTRITIFS
EFFECTUEES AU LABORATOIRE DE CHIMIE DU CRODT.
.DC&AGE DES NITRITFZ
1. PRINCIPE DE LA METHODE
Les ions nitrites forment un diazoïque avec la sulfanilamide
en
milieu acide (PH < Z), puis ce diazoïque réagit avec le
N-naphtyl-éthylènediamine pour former un composé rouge.
Celui-ci
absorbe à la longueur d'onde de 543 nm.
2. APPAREILLAGE
Spectrophotomètre BAUSCH & LOMB 2000 avec cuve de 10 cm de
trajet optique.
3. REACTIFS
3.1. Rl.: SOLUTION DE SULFANILAMIDE
Dans une fiole de 500 ml:
- Diluer 50 ml d'acide chlorhydrique concentré (d = 1.19)
dans environ 300 ml d‘eau démineralisee.
- Dissoudre 5
g de sulfanilamide (CsHaN202s)
dans cette
solution.
- Compléter à 500 ml avec de l'eau deminéralisée.
Solution stable plusieurs mois.
3.2. R2: SOLUTION DE N-NAPHTYL
Dissoudre 0,5
g de
N-naphtyl-1
éthylènediamine
dichlorhydrate (CloH?NHCHzCHzNHz,
ZHCl, CH3OH) dans 500 ml d'eau
deminéralisée.
Solution à conserver au froid et à l'abri de la lumière. La
renouveler tous les mois ou dés qu'il y a changement de
coloration.
3.3. SOLUTION ETALON PRIMAIRE DE NITRITE (5 uatg N-N02 / ml)
Dissoudre 0,345 g de nitrite de sodium (NaNOz) dans 1 1
d'eau déminéralisée et ajouter 1 ml de chloroforme.
Cette solution,
conservée au
froid et à l'abri de la
lumière est stable 2 mois.
3-4. SOLUTION ETALON SECONDAIRE (0,05 uatg N-NO2 / ml)
Diluer 100 fois la solution primaire.
Cette solution ne se conserve pas et doit être préparée
extemporan6ment.
39
4. MODE OPERATOIRE
4.1. PROCESSUS GENERAL
Dans 50 ml d'eau à analyser:
- Ajouter 1 ml du réactif 1 et melanger.
- Laisser reposer 5 mn.
- Ajouter 1 ml du réactif 2 et mélanger.
- Attendre au moins 15 mn le développement de la coloration
mais pas plus de lh 30.
- Mesurer l'absorbante en
cuve de 10 cm à 543 nm, en
prenant de l'eau déminéralisée comme référence:
soit A cette
valeur.
4.2. GAMME ETALON
Dans des fioles de 50 ml introduire O,l- 0,2- 0,5- 0,7-
1 ml de la solution étalon secondaire et compléter à 50 ml avec
de l'eau deminéralisée afin d'obtenir une gamme de concentration
de O,l- O,2- 0,5- O,?- 1 uatg N-NO2 / 1.
Faire l'analyse de chacun des étalons en suivant le
processus géneral du paragraphe 4.1.
On obtient une droite d'étalonnage donnant l'absorbante en
fonction de la concentration. Soit P la pente de cette droite.
4.3. BLANCS
4.3.1. Blanc & turbidité
C'est l'absorbante de l'échantillon brut mesurée par
rapport à l'eau déminéralisée: soit Bt cette valeur.
4.3.2. Blanc des réactifs
C'est l'absorbante produite par les réactifs eux mêmes.
Prendre 50 ml d'eau déminéralisée et y ajouter les
réactifs
comme pour une
analyse normale (% 4.1.). Faire 3
déterminations et mesurer l'absorbante par rapport à l'eau
déminéralisée:
soit Br la moyenne de ces valeurs.
5. CALCULS
Soit:
- A l'absorbante de l'échantillon traité,
- Bt le blanc de turbidité,
- Br l'absorbante moyenne des blancs réactifs,
- P
la pente de
la droite d'étalonnage
(absorbante en
fonction de la concentration).
L'absorbante nette est: D = A - Bt - Br
La concentration en uatg N-N02 / 1 est: C = D/P
DOSAGE DES NITRATES ET DES NITRITES
1. PRINCIPE DE LA METHODE
Les ions nitrates
sont réduits en ions
nitrites par contact
avec des copeaux de cadmium en présence de chlorure d'ammonium.
Les ions nitrites ainsi obtenus et les nitrites également
présents dans
l'kzhantillon forment un diazoïque
avec la
sulfanilamide en milieu
acide, puis ce diazoïque
réagit avec le
N-naphtyl-éthylènediamine pour former un composé rouge. Celui-ci
absorbe à la longueur d'onde de 543 nm.
2. APPAREILLAGE
Spectrophotomètre BAUSCH & LOMB 2000 avec cuve de 1 cm de
trajet optique.
Agitateur avec tubes de 10 ml à bouchons vissés.
3. REACTIFS
3.1. Rl: SOLUTION DE SULFANILAMIDE
Même reactif que pour le dosage des nitrites (§ 3.1.).
3.2. R2: SOLUTION DE N-NAPHTYL
Même réactif que pour le dosage des nitrites (13 3.2.).
3.3. SOLUTION DE CHLORURE D'AMMONIUM A 250 g/l
Dissoudre 250 g de chlorure d'ammonium dans 1 1 d'eau
déminéralisée.
3.4. SOLUTION ETALON PRIMAIRE DE NITRATE (10 uatg N-NO3 / ml)
Dissoudre 1,012 g de nitrate de potassium (KNO3)
dans 1 1
d'eau déminèralisée et ajouter 1 ml de chloroforme.
Cette solution,
Conserv&e au
froid et & l'abri de la
lumière est stable plusieurs mois.
3.5. SOLUTION ETALON SECONDAIRE
Diluer 100 fois la solution primaire.
Cette solution ne se conserve pas et doit &re préparée
extemporanément.
41
4. PREPARATION DU CADMIUM
4.1. REACTIFS
4.1.1. Solution de chlorure d'ammonium Q,m
Dissoudre 5,345 g de chlorure d'ammonium (MH4Cl) dans 1 1
d'eau déminéralisée.
4.1.2. Solution & chlorure mercurisue
Préparer une solution à 10,lO g de chlorure mercurique
(HgClz) par litre dans de l'eau déminéralisée.
4.1.3. Solution d'acide chlorhydrique 2N
Diluer 32 ml d'acide chlorhydrique concentré (d = 1,19)
dans 200 ml d'eau déminéralisée.
4.1.4. Solution d'acide nitrique Q,a
Diluer 2,6 ml d'acide nitrique (d =
1,50) dans 200 ml
d'eau déminéralisée.
4.1.5. Solution de sulfate de cuivre Q,Q&J
Dissoudre 4
g de sulfate de cuivre fCuSO4, 5Hzû) dans
200 ml d'eau déminéralisée.
4.2. PREPARATION DU CADMIUM
Deux méthodes ont été utilisées:
4.2.1. Méthode 1.
- Prendre environ 50 g de cadmium en grains de 0.5 à 2 mm
de diamètre.
- Traiter le cadmium par environ 100 ml de solution de
chlorure mercurique en agitant 3 mn.
- Laver abondamment à l'eau déminéralisée jusqu'à ce
qu'il n'y ait plus de particules fines en suspension.
- Conserver le
cadmium ainsi traité dans la solution de
chlorure d'ammonium 0,lM.
4.2.2. Méthode 2
- Prendre environ 50 g de cadmium en grains de 0.5 à 2 mm
de diamètre.
- Laver
à l'acide chlorhydrique
2N puis rincer à l'eau
déminéralisée.
- Laver à l'acide nitrique 0,3N puis rincer à l'eau
déminéralisée.
- Traiter le cadmium par environ 100 ml de solution de
sulfate de
cuivre en agitant
jusqu'au virage de la
solution du
bleu au noir.
- Laver abondamment à l'eau déminéralisée jusqu'à ce
qu'il n'y ait plus de particules fines en suspension.
- Conserver le
cadmium ainsi traité dans la solution de
chlorure d'ammonium 0,lM.
42
5.1. PROCESSUS GENERAL
Dans un tube de 10 ml a bouchon vis&:
- Mwttre 5 ml d'eau à analyser.
- Ajouter environ 1 g de cadmium traité.
- Ajouter O,l ml de solution de chlorure d'ammonium à 250
a/1 '
- Agiter pendant 30 mn.
- Prélever une aliquote de 2,5 ml de cette solution.
Le processus
est alors identique
à celui utilistz:
pour le
dosage des ions nitrites. Dans cette aliquote de 2,5 ml:
- Ajouter O,O5 ml du rbactif 1 et melanger.
- Laisser reposer 5 mn.
- Ajouter O,O5 ml de réactif 2 et mélanger.
- Attendre au moins 15 mn le développement de la coloration
mais pas plus de ih 30.
- Mesurer l'absorbante en cuve de 1 cm à 543 nm, en prenant
de l'eau dkminéralisée comme réfkrence: soit A cette valeur.
5.2. GAMME ETALON
Dans des fioles de 50 ml introduire 0,5- l- 2- 3- 4 ml de
la solution étalon secondaire et compléter à 50 ml avec de l'eau
déminéralisée afin d'obtenir une gamme de concentration de l- 2-
4- 6- 8 uatg N-NOa / 1.
Faire l'analyse de chacun des étalons en suivant le
processus général du paragraphe 5.1.
On obtient une droite d'étalonnage donnant l'absorbante en
fonction de la concentration. Soit P la pente de cette droite.
5.3. BLANCS
5.3.1. Blanc de turbidité
C'est l'absorbante de l'échantillon brut mesurée par
rapport à l'eau déminéralisée: soit Bt cette valeur.
5.3.2. Blanc des réactifs
C'est l'absorbante produite par les réactifs eux mêmes.
Prendre 5 ml d'eau déminéralisée et suivre le processus
général (§ 5.1.) comme pour une analyse normale. Faire 3
déterminations et mesurer l'absorbante par rapport à l'eau
déminéralisée:
soit Br la moyenne de ces valeurs.
43
6. CALCUL
Soit:
- A l'absorbante de l'échantillon traité,
- Bt le blanc de turbidité,
- Br l'absorbante moyenne des blancs réactifs,
- P la pente de la droite d'étalonnage (absorbante en
fonction de la concentration).
L'absorbante nette est: D = A - Bt - Br
La concentration en uatg N-NO3 / 1 est: C q D/P
44
DOSAGE DES SILICATES
1. PRINCIPE DE LA METHODE
Les
silicates réagissent
avec le
molybdate pour
former un
complexe
silice-molybdique
jaune.
Les phosphates réagissent
également
avec le molybdate mais les complexes formés sont
détruits par l'acide oxalique. Le complexe silice-molybdique est
réduit par le
métol en
un composé
bleu qui
permet un dosage
colorimètrique.
2. APPAREILLAGE
Spectrophotomètre BAUSCH & LOMB 2000 avec cuve de 1 cm de
trajet optique.
3. REACTIFS
3.1. Ri: MOLYBDATE
Dans une fiole de 500 ml:
- Dissoudre 4 g de paramolybdate
d'ammonium (NH4 )6 M07024,
4H2G dans environ 300 ml d'eau distillée.
- Ajouter 12 ml d'acide chlorhydrique concentré.
- Compléter à 500 ml avec de l'eau distillée.
Cette solution peut se conserver en flacon de polyéthylène
à l'abri de la lumière.
3.2. SOLUTION DE METOL-SULFITE
Dans une fiole de 500 ml:
- Dissoudre 6 g de sulfite de sodium anhydre (NazSOa).
- Ajouter 10 g de métol (sulfate de p-méthylaminophenol,
Ch-tH2oI'hOsS).
- Compléter à 500 ml avec de l'eau distillée.
Cette solution se détériore en deux à trois semaines en
prenant une couleur sombre.
3.3. SOLUTION D'ACIDE OXALIQUE
Dissoudre 50 g d'acide oxalique (C2H204, 2H20) dans 500 ml
d'eau distillée.
Cette solution reste stable indefiniment.
45
3.4. SOLUTION D'ACIDE SULFURIQUE A 50%
Ajouter 250 ml d'acide sulfurique concentré (d=l,84) à 250
ml d'eau diçtillee.
3.5. R2: REDUCTEUR
Pour obtenir 300 ml de ce réactif, mélanger dans l'ordre
les solutions suivantes:
- 100 ml de solution de métol-sulfite.
- 60 ml de solution d'acide oxalique.
- 60 ml d'acide sulfurique à 50%.
- 80 ml d'eau distillée.
Cette solution doit être préparée extemporanément.
3.6. SOLUTION ETALON PRIMAIRE DE SILICIUM (5 uatg Si / ml)
Dissoudre 0,960 g d'hexafluorosilicate de sodium (NazSiFe)
dans 1 1 d'eau distillée (cette dissolution peut être lente aussi
est il conseillé d'écraser les agrégats dans un bécher en
plastique afin de l'accélérer), et ajouter 1 ml de chloroforme.
Cette solution, conservée en flacon plastique au froid et à
l'abri de la lumière est stable plusieurs mois.
3.'7. SOLUTION ETALON SECONDAIRE (0,s uatg Si / ml)
Diluer 10 fois la solution primaire.
Cette solution ne se conserve pas et doit être préparée
extemporanément.
4. MODE OPERATOIRE
4.1. PROCESSUS GENERAL
En amont du barrage de Diama,
les
concentrations en
silicate étant élevées, chaque échantillon a dû être dilué 5 fois
avec de l'eau distillée.
Dans un tube de 10 ml:
- Introduire 2 ml de réactif 1.
- Ajouter 5 ml d'échantillon dilué et mélanger.
- Laisser réagir 10 mn. Ce temps de réaction doit rester le
même pour tous les échantillons et étalons à analyser.
- Ajouter 3 ml de réactif 2 et mélanger.
- Attendre 2 heures et mesurer l'absorbante en cuve de 1 cm
à 81.0 nm en prenant l'eau distillée comme référence: Soit A cette
v a l e u r .
4.2. GAMME ETALON
Dans des fioles de 50 ml introduire i- 2- 3- 4 - 5 ml de
solution étalon
secondaire et
compléter à 50
ml avec de l'eau
distillée afin d'obtenir une gamme de concentration de 10- 20-
30- 40- 50 uatg Si / 1.
Faire l'analyse de chacun des étalons en suivant le
processus généxal du paragraphe 4.1. (sans la dilution).
On obtient une droite d'étalonnage donnant l'absorbante en
fonction de la concentration. Soit P la pente de cette droite.
4.3. BLANCS
4.3.1. Blanc & turbidité
C'est l'absorbante de l'échantillon dilué par rapport à
l'eau distillée: soit Bt cette valeur.
4.3.2. Blanc des réactifs
C'est l'absorbante produite par les réactifs eux mêmes.
Prendre 5 ml d'eau distillée et y ajouter les réactifs
comme pour une
analyse normale (§ 4.1.).
Faire 3 déterminations
et mesurer l'absorbante par rapport à l'eau distillée: soit Br la
moyenne de ces valeurs.
5. CALCULS
Soit:
- A l'absorbante de l'échantillon traité (dilué 5 fois),
- Bt le blanc de turbidité,
- Br le blanc réactif moyen,
- P la pente de la droite d'étalonnage
(absorbante en
fonction de la concerrtratior~).
L'absorbante nette est: D = A - Bt - Br
La concentration en uatg Si / 1 est: C q (D/P)M
47
DOSAGE DU PHOSPHOBE MIWERAL DISSOUS
1. PRINCIPE DE LA METHODE
Les ions
phosphates réagissent avec le molybdate d'ammonium,
en
présence
d'antimoine,
pour
former un
complexe
phospho-molybdique
jaune.
Celui ci
est
réduit
par l'acide
ascorbique en un
composé
bleu qui
permet un
dosage
calorimétrique.
2.. APPAREILLAGE
Spectrophotom&tre BAUSCH 8~ LOMB 2000 avec cuve de 10 cm de
trajet optique.
3. REACTIFS
3.1. MOLYBDATE
Dissoudre 15 g de paramolybdate d'ammonium
(NH4 )6kt07&24,
4820 dans 500 ml d'eau déminéralisée.
Cette solution peut se conserver en flacon polyéthylène à
l'abri de la lumike.
3.2. SOLUTION D'ACIDE SULFURIQUE
Ajouter, avec précaution, 140 ml d'acide sulfurique (densité
1,84) dans 900 ml d‘eau déminéralisée.
3.3. SOLUTION D'ACIDE ASCORBIQUE
Dissoudre 27 g
d'acide ascorbique CsHsOs dans 500 ml d'eau
déminéralisée.
Cette solution
peut se
conserver
plusieurs
mois au
congélateur.
3.4. SOLUTION DE TARTRATE
Dissoudre
0334
g
d'oxytartrate de
potassium et
d'antimoine(II1) K(SbO)C4H406 dans 250 ml d'eau déminéralisée, en
chauffant si nécessaire.
Cette solution
peut se
conserver
plusieurs
mois au
réfrigérateur.
48
3.5. MELANGE- REACTIF
Mélanger les
réactifs
ci-dessus dans
les proportions
suivantes:
- 100 ml de solution de molybdate d'ammonium,
- 250 ml de solution d'acide sulfurique,
- 100 ml de solution d'acide ascorbique,
- 50 ml de solution de tartrate.
Ce mélange ne se conserve pas plus de 6 heures et doit être
préparé extemporanément.
3.6. SOLUTION ETALON PRIMAIRE DE PHOSPHATE (5 uatg de P / ml}
Apres
séchage & l'étuve et passage au dissecateur, peser
0,6805 g de dihydrogénophosphate de potassium anhydre (!XHzPOa).
Dissoudre celui ci dans 1 1 d‘eau déminéralisée et ajouter 1 ml
de chloroforme.
Cette solution
peut se
conserver
plusieurs
mois au
réfrigérateur.
3.7. SOLUTION ETALON SECONDAIRE DE PHOSPHATE (0,05 uatg P / ml)
Diluer 100 fois la solution primaire.
Cette solution ne se conserve
pas et doit être préparée
extemporanément.
4. MODE OPERATOIRE
4.1. PROCESSUS GENERAL
Dans 50 ml d'eau à analyser:
- Ajouter 5 ml de mélange réactif et homogénéiser,
- Attendre 1 heure le développement de la coloration,
- Mesurer l'absorbante en cuve de 10 cm à 827 nm (le maximum
d'absorption est à 885 nm, la mesure à 827 nm est due aux limites
de notre appareil), en prenant
de l'eau déminkalisée comme
réference: soit A cette valeur.
4.2. GAMME ETALON
Dans des fioles de 50 ml introduire 0,5- i- 1,5- 2- 3 ml de
la solution étalon secondaire et compléter à 50 ml avec de l'eau
déminéralisée afin d'obtenir une gamme de concentration de 0,5-
1- 1,5- 2- 3 uatg P-P04 / 1.
Faire l'analyse de chacun
des
étalons en
suivant le
processus général du paragraphe 4.1.
On obtient
une droite d'étalonnage donnant
l'absorbante en
fonction de la concentration. Soit P la pente de cette droite.
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4.3. BLANCS
4.3.1. Blanc & turbidité
C'est l'absorbante de l'echantillon brut mesurée par
rapport à l'eau démineralisée: soit Bt cette valeur.
4.3.2. Blanc des reactifs
C'est l'absorbante produite par les réactifs eux mêmes.
Prendre 50 ml d'eau déminéralisée et y ajouter les
réactifs
comme
pour
une
analyse normale
(§ 4.1.). Faire 3
déterminations et mesurer l'absorbante par rapport à l'eau
déminéralisée:
soit Br la moyenne de ces valeurs.
5. CALCULS
Soit:
- A l'absorbante de l'échantillon traité,
- Bt le blanc de turbidité,
- Br l'absorbante moyenne des blancs réactifs,
- P
la pente de
la droite d'étalonnage
(absorbante en
fonction de la concentration).
L'absorbante nette est: D = A - Bt - Br
La concentration en uatg P-P04 / 1 est: C = D/P